An entirely new method of optical microscopy in transmitted light “Relief Contrast after Hostounsk ̆” or RCH, Lambda Ltd. Praha, Czech Republic, was used to study of integument surface replicas of reptiles (microrelief adhesive method after Wolf) as well as reptilian sloughts. This equipment provides a three-dimensional image of high contrast and resolution. Compared to microscopy without phase or interference contrast, RCH-microscopy makes it possible to evaluate a three-dimensional organization of microrelief on reptilian scales. Results obtained from these microscopical observations can be used for both ecological and taxonomical studies on animals.
The article deals with reconstruction of the portable microscope MEOPTA BC 28 SV into polarized microscope and its using for the study of living biological objects (native specimens). This process (described in detail here) allowed us to display birefringent structures in living cells. The method is illustrated by two examples of biological objects (marine planarian - very moving and marine filamentous green alga). The modified portable microscope MEOPTA Prague BC 28 SV was used (powerful lighting with special pad own construction; circular centring microscope stage; MEOPTA Prague polarizer, LOMO St. Petersburg analyzer and quartz compensator Kv. kr. with first-order red as well LOMO St. Petersburg; achromatic objectives 6/0,15 and 10/0,30;DSLR Nikon D 70 digital SLR camera) to the study of both organisms. This method can provide good results when observing birefringent structures and with microphotographs. This our method can be recommended for viewing living objects (in movement) and determining the maximum birefringence of these structures using crossed polarizers (nicols), first-order quartz compensator and circular centring microscope stage. and Článek se zabývá přestavbou cestovního mikroskopu MEOPTA BC 28 SV na polarizační a jeho využitím ke studiu živých biologických objektů (nativních preparátů). Navržený postup (zevrubně popsaný v práci) umožňuje přesně zjistit dvojlomné struktury v živé buňce. Metoda je ukázána na dvou příkladech biologických objektů (mořská ploštěnka - velmi pohyblivá a mořská vláknitá zelená řasa). Byl použit cestovní mikroskop MEOPTA BC 28 SV s těmito úpravami (silnější zdroj světla s podložkou vlastní konstrukce, centrovatelný otočný stolek, polarizátor MEOPTA Praha, analyzátor a křemenný kompenzátor Kv. kr. I. řádu – oba LOMO St. Petersburg, achromatické objektivy 6/0,15 a 10/0,30 a digitální SLR fotoaparát DSLR Nikon D 70) ke studiu obou organismů. Tímto způsobem lze dosáhnout dobrých výsledků (pozorování dvojlomných struktur) i mikrofotografií. Metodu lze doporučit pro studium živých objektů (i značně pohyblivých) a pomocí zkřížených polarizátorů (nikolů), křemenného kompenzátoru I. řádu a otočného stolku (přesné nastavení azimutu) zjistit i maximální dvojlom studovaných struktur.
The article deals with simultaneous use of relief and polarization microscopy. This process (described in detail here) provides a view of a birefringent structure even in dimly viewed architecture of living cells. Using simple devices and two methods described here one gets a very contrasting relief picture with a 3D effect. The method is illustrated by two examples of biological objects (coccal and trichal green algae) studied by two methods (polarizing microscopes LOMO St. Petersburg - retractable diaphragm of dark neutral density filter and Carl Zeiss Jena Polmi A - eccentrically retractable aperture diaphragm). Both these methods can provide good results when observing birefringent structures and with microphotographs. The methods can be recommended for viewing objects whose light refractive index approaches the refractive index of the surrounding environment (e.g. granules in cell cytoplasm) and determining the maximum birefringence of these structure using crossed polarizers (nicols), first-order quartz compensator and rotary table. and Článek se zabývá simultánním použitím reliéfní a polarizační mikroskopie. Tento postup (zevrubně popsaný v práci) umožňuje zjistit dvojlomné struktury i v nezřetelně zobrazené architektuře živé buňky. Pomocí jednoduchých prostředků (popsány dva způsoby práce) dostaneme velmi kontrastní reliéfní obraz s 3D-efektem. Metoda je ukázána na dvou příkladech biologických objektů (kokální a trichální zelené řasy) studovaných dvěma způsoby (polarizační mikroskopy LOMO St. Petersburg - zasunovací clona z tmavého neutrálního filtru a Carl Zeiss Jena Polmi A - excentricky vysunovatelná aperturní clona). Oběma těmito způsoby lze dosáhnout dobrých výsledků (pozorování dvojlomných struktur) i mikrofotografií. Metody lze doporučit pro pozorování objektů, jejichž index lomu světla se blíží indexu lomu okolního prostředí (např. granula v cytoplasmě buněk) a pomocí zkřížených polarizátorů (nikolů), křemenného kompenzátoru I. řádu a otočného stolku zjistit i maximální dvojlom těchto struktur.
The article deals with simultaneous use of color phase contrast and polarization microscopy in the study of living biological objects (native specimens). This process (described in detail here) allowed us to display birefringent structures in living cells (refractive index of light of these structures approaching that of the environment, e.g. cytoplasm). The method is illustrated by two examples of biological objects (flagellate and amoeba), which are in movement. Modified laboratory microscope Carl Zeiss Jena type NfpK was used (powerful lighting; a LOMO St. Petersburg turntable fixed in a centering holder of our own design; basic body In Ph 160 with exchangeable module Ph; Meopta Prague polarizer, analyzer and quartz compensator Kv. kr. with first-order red manufactured by LOMO St. Petersburg; second analyser Lambda Prague; centering lenses Carl Zeiss Jena Planachromat 16/0,32 and Planachromat 40/0,65; DSLR Nikon D 70 digital SLR camera). This method can provide good results when observing birefringent structures and with microphotographs. This our method can be recommended for viewing living objects (in movement) whose light refractive index approaches the refractive index of the surrounding environment (e. g. granules in the cell cytoplasm) and determining the maximum birefringence of these structures using crossed polarizers (nicols), first-order quartz compensator and rotary table. and Článek se zabývá současným použitím barevného fázového kontrastu a polarizační mikroskopie při studiu živých biologických objektů (nativních preparátů). Tento postup (zevrubně popsaný v práci) umožňuje přesně zjistit dvojlomné struktury v živé buňce, které se svým indexem lomu blíží indexu lomu prostředí (vykazují malý kontrast). Metoda je ukázána na dvou příkladech biologických objektů (bičíkovec a měňavka), které jsou v pohybu. Byl použit upravený laboratorní mikroskop Carl Zeiss Jena NfpK (silnější zdroj světla, otočný stolek s centrační podložkou vlastní konstrukce, zařízení pro fázový kontrast, polarizační zařízení atd.). Tímto způsobem lze dosáhnout dobrých výsledků (pozorování dvojlomných struktur) i mikrofotografií. Metodu lze doporučit pro pozorování živých objektů (i pohyblivých) a pomocí zkřížených polarizátorů (nikolů), křemenného kompenzátoru I. řádu a zejména otočného stolku (přesné nastavení azimutu) zjistit i maximální dvojlom studovaných struktur.
In this paper we present an approved leakage remedy process for older models of Carl Zeiss Jena photo-micrographic apparatuses. They include three models of light-tight boxes suitable for photo-micrographic apparatuses with telescopic focusing prism (model No. 1), with fixed focusing prism (model No. 2) and a special photo-micrographic apparatus for the microscope Zeiss Fluoval 2 with firmly mounted photo-eyepiece in trinocular body tube and focusing dioptric adjustable eyepiece (model No. 3). Examples of light-tight boxes used for taking pictures of micro-organism are also presented.
Unikaryon montanum sp, n. infects the fat body, muscle, Malpighian tubules and ovaries of adult Ips typographus L. The development is haplokaryotic, with separate nuclei during the schizogony and sporogony. Sporonts have the cellular envelope with added layer of electron dense material. Two types of spores are formed: small broad-oval primary spores, 1.5 x 1.0 pm, with warty surface of spore wall, uninucleate, with isofilar polar filament in 5/6 coils and elongated-oval environmental spores, 0.8-1 x 2 pm, with warty spore wall attenuated at the anterior end, uninucleate, with spore polar filament in 8 coils. Both types have a dual polaroplast with the anterior part of a layer of confluent fine lamellae ending posteriorly in bulbous processes, and posterior part composed of coil of tubules.